作者:麻艳威,南京农业大学博士在读,主要研究植物微生物互作。
木质素是地球上最丰富的芳香族碳聚合物,难降解且结构复杂,广泛存在于植物细胞壁中。它在全球碳循环和生物质能源转化中扮演关键角色。自然界中,微生物往往以群落形式协同作用,完成木质素的高效降解,但其中的互作机制仍知之甚少。本研究采用“自上而下”的富集策略,从东海滨海湿地筛选出一个具有木质素降解能力的细菌联合体(简称LD),以Pluralibacter gergoviae为主导菌(占比98%以上),同时伴有一些低丰度的非降解菌(如假单胞菌)。尽管这些低丰度的非降解菌不具备直接降解木质素的能力,但却能通过分泌氨基酸、有机酸和醇类等代谢物“反哺”主导菌,促进整个群落的生长与木质素降解效率。利用宏基因组、代谢物谱、基因组尺度代谢模型(GSMM)及共培养实验,研究揭示了菌群内的代谢交叉喂养机制。该成果不仅揭示了群落中“非主流成员”的关键功能,也为人工合成高效微生物菌群提供了新的理论支撑与设计思路。未来,这类菌群有望在生物能源转化、环境修复和碳循环调控等领域发挥重要作用。
一、细菌联合体在细胞生长与木质素降解方面优于单独的P. gergoviae
在本研究中,作者通过“自上而下”富集策略,连续传代培养了40代,构建并稳定获得了一个具木质素降解能力的细菌联合体(LD),其接种源为中国东海滨海潮间带湿地(图1A、图S1A)。培养结果显示,联合体在第1代时的木质素降解率为7.71%,细胞密度达2.27×10⁸cfu/mL;至第21代,群落生长速率提高至少两倍,降解率略升至8.11%;第40代时,LD表现出稳定生长(第5天达4.46×10⁸cfu /mL)和较高木质素降解能力(8.53%)(图1B、图S1B、C)。同时,LD显著促进可溶性总有机碳(tDOC)积累(图1C)。傅里叶变换离子回旋共振质谱(FT-ICR-MS)和LC-MS/MS代谢组分析进一步揭示其富集多种木质素衍生代谢物,包括酚类、芳香族羧酸、脂肪族化合物与稠环芳烃等(图S2A–B,补充数据1),表明其具有良好的木质素转化能力。16S rRNA扩增子分析显示,LD群落组成在连续传代中保持相对稳定,至第41代共检出78个ASVs,其中Pluralibacter ASV1占据主导(98%),其余如Vibrio、Aeromonas、Shewanella等属菌丰度较低但持续存在(图1D、S1D)显示出其生态稳定性和潜在的功能贡献。
为解析LD联合体的木质素降解潜力,研究团队对其进行了宏基因组测序与功能注释分析。宏基因组测序进一步确认Pluralibacter gergoviae为LD中的优势菌,其MAG完整度>90%、污染度<5%,相对丰度超过99%(图S3A)。其他低丰度菌如Vibrio natriegens、Aeromonas hydrophila和Shewanella putrefaciens虽被检测到,但未能成功组装完整MAG,结果与扩增子分析一致。对P. gergoviae的功能注释表明其具备完整的木质素氧化和芳香族代谢能力。其MAG中鉴定出dypA、dypB等DyP型过氧化物酶基因及gox、nuoEFG、dld、cat、gpx、sod、trxB等辅助酶基因,参与木质素脱聚和氧化胁迫缓解(图S3B)。此外,P. gergoviae携带82个芳香族代谢相关基因家族,涵盖苯甲酸、对羟基苯甲酸、原儿茶酸和儿茶酚等多条通路。相比之下,联合体中其他菌仅零散携带部分相关基因,缺乏完整路径,表明P. gergoviae是该联合体中唯一具明确降解能力的核心菌,其余成员可能在共生网络中发挥辅助作用。
图1 LD菌群在木质素条件下长期富集过程中的细胞生长、木质素降解能力及群落结构变化
二、细菌群落建模模拟多菌组合的生长
为评估低丰度非降解菌对联合体功能的影响,研究选取了优势菌Pluralibacter ASV1及三种在群落中稳定存在的非降解菌ASVs(Vibrio ASV5、Aeromonas ASV18、Shewanella ASV20)。通过分离获得与这些ASV高度匹配的代表性菌株,并在木质素为唯一碳源的条件下进行单菌培养。结果显示,仅P. gergoviae具备木质素降解能力(降解率为2.18%),其余三株菌在该条件下几乎不生长,亦无降解活性(图2A–C),验证其为非降解菌。相比单菌体系,P. gergoviae在LD联合体中表现出更高的细胞密度和木质素降解效率,联合体中可溶性有机碳及多种脂肪族和芳香族代谢产物亦显著富集(图S2C–D,图S3D)。此外,三种非降解菌在联合体中可稳定增殖,而在单独培养时则数量下降,提示其生长依赖于群落环境。综上,尽管P. gergoviae为联合体中唯一的降解菌,但非降解菌通过群落互作显著促进了其生长与降解表现,支持了二者间潜在的互利关系。
图2 四种菌株在单培养与共培养条件下的生长差异
三、四种菌株因代谢物交叉喂养而获益

为解析LD联合体中种间互作机制,本研究构建并验证了P. gergoviae、A. hydrophila、S. putrefaciens和V. alginolyticus的基因组尺度代谢模型(GSMM),基于基因组注释与生长实验(图3A、图S4、表1)。考虑木质素结构的复杂性,手动整合了G型、S型和H型单体降解反应至P. gergoviae模型,并据实优化。最终获得四个高一致性模型(MEMOTE评分98–99%,模型统计详见表1)。基于简约流量平衡分析(pFBA),在1%木质素培养条件下模拟了所有菌种组合的生长情况。模型预测显示,四菌间存在木质素衍生物、甘油、氨基酸和有机酸等的代谢交换(图3B、图S6),且多菌组合生物量均高于单菌,四菌组合表现最佳(图3C)。动态模拟(dFBA)进一步揭示,群落生长优势受初始接种比例影响显著。共培养实验验证了模拟结果。与单菌相比,所有多菌组合生长显著提升,其中四菌组合的细胞密度为P. gergoviae单菌的两倍,并最接近LD联合体水平(图4A、B)。对应的木质素降解率亦升至3.39%。此外,仅在初始比例为107:105:105:105copies/mL时,群体展现协同效应;反之,非降解菌比例过高则抑制降解菌生长(图S5–S7)。综上,四菌组合可重现LD群落的生长优势,其机制可能源于代谢物交叉喂养驱动的互利共生关系。
图3 基于代谢建模的种间互作分析
表 1 单个菌株及四菌组合的基因组尺度代谢模型总体统计信息
四、降解菌与非降解菌之间的代谢物交叉喂养促进了群落生长和木质素降解
为评估LD联合体中潜在的交叉喂养机制,本研究通过pFBA模拟预测了四菌组合的代谢物交换通量(图3A,补充数据6E)。结果表明,P. gergoviae可分泌琥珀酸、苹果酸和丝氨酸等代谢物,支持非降解菌生长;而V. alginolyticus、A. hydrophila和S. putrefaciens则回馈甘油、天冬氨酸、丙氨酸和延胡索酸,促进P. gergoviae增殖(图3B、D)。此外,P. gergoviae释放的木质素降解中间产物PCA可被V. alginolyticus进一步代谢,构成互利循环。靶向代谢物分析在四菌共培养体系中检出6种关键代谢物(PCA、甘油、琥珀酸、苹果酸、丙氨酸、天冬氨酸),其中琥珀酸与苹果酸主要来源于P. gergoviae,而甘油和氨基酸则由非降解菌提供(图4C、图S8–S9)。菌株剔除实验显示,剔除任一非降解菌均显著影响目标代谢物的积累水平,进一步支持交叉喂养的物种特异性。模拟结果也表明,琥珀酸交换通量需求最高,可能为限制性因子(图S5B)。单菌补加验证实验显示,添加特定交叉代谢物可显著促进对应菌株生长,平均提升约2倍,而阴性对照(补加自身代谢物或异源背景菌)无显著促进作用,部分甚至抑制生长(图4D),进一步确认了这些代谢物的协同功能。
进一步的非靶向代谢组分析揭示,四菌共培养体系中特异富集218种代谢物,包括芳香族、烷烃、醇类和酮类化合物(补充数据8B),而三菌组合或单菌体系则各自富集近百种独特代谢物(补充数据8C–F)。其中,芳香醇类物质在四菌组合中显著上升(图S10),不仅为木质素降解中间体,也可能参与群体感应(quorum sensing)调控。综上,研究明确了P. gergoviae与三种非降解菌之间的代谢互补关系:P. gergoviae提供碳源与芳香代谢中间体,非降解菌反哺能量代谢相关底物与氨基酸,形成稳定的交叉喂养网络,从而增强群落整体的生长表现和木质素降解效率。
图4 基于共培养生长与代谢谱特征验证种间互作关系
本研究以滨海来源的LD菌群为模型,系统解析了低丰度非降解菌在木质素转化过程中的功能贡献,揭示了其通过小分子代谢物的交叉喂养与核心降解菌形成协同互作,从而共同促进群体生长与木质素降解效率提升。该发现不仅加深了对自然微生物群落中种间互作机制的理解,也为构建高效木质素转化的“自下而上”人工合成菌群提供了新思路。尽管简化合成群落验证了部分互作机制,当前仍面临微生物分离培养与代谢模型构建的技术挑战。未来,随着系统生物学和建模技术的持续发展,将有望实现对微生物群落复杂互作行为的高精度模拟与预测,从而为天然群落功能解析及人工菌群的优化设计提供坚实的理论基础与工具支持。
论文信息
原名:Modeling bacterial interactions uncovers the importance of outliers in the coastal lignin-degrading consortium
译名:细菌互作建模揭示木质素降解联合体中“边缘成员”的重要性
期刊:Nature Communications
DOI:10.1038/s41467-025-56012-8
发表时间:2025年1月6日
通讯作者:Lu Lin
通讯作者单位:Institute of Marine Science and Technology, Shandong University, Qingdao, China.